抗鸭坦布苏病毒卵黄抗体的制备

鸭坦布苏病毒病是由鸭坦布苏病毒（Duck tembusu virus，DTMUV）引起的蛋鸭和种鸭一种急性传染病，病鸭以采食量和产蛋率急剧下降并伴有淘汰和死亡为特征 ^[1~2] 。该病自 2010 年首次在我国发现以来，目前在各蛋鸭场和种鸭场均有不同程度的发生，已成为危害养鸭业最严重的疾病之一。卵黄抗体是存在于禽类卵黄中的免疫球蛋白，与血清中的 IgG 相似，由于其蛋白质的物理、化学和免疫性质和哺乳动物 IgG 存在一定的差异，故这种抗体被命名为“IgY”^[3] 。近几十年来国内外学者就卵黄抗体的研究和开发做了许多工作，证明 IgY 是一种高效特异的抗体。免疫鸡的卵黄可成为制备特异性免疫球蛋白最方便、最廉价的来源 ^[4] 。鸭坦布苏病毒病发病急，传播迅速，目前尚无有效的疫苗可用，药物治疗效果也不理想，临床上较难控制 ^[5] 。高免卵黄抗体的治疗效果已在长期的临床实践中得到了认可，特别在鸡传染性法氏囊病、鸭病毒性肝炎等疾病的治疗和预防效果中确实可靠。本研究拟用鸭坦布苏病毒灭活疫苗免疫高产蛋鸡，多次强化免疫后收集所产的高免鸡蛋，以制备鸭坦布苏病毒卵黄抗体。

1、材料与方法

1.1 材料

1.1.1 病毒株

鸭坦布苏病毒由华南农业大学兽医学院微生物教研室提供。

1.1.2 鸭胚

非免疫 10～11 日龄麻鸭胚,购自广州市白云区某番鸭种鸭场。

1.1.3 实验动物

140 日高产蛋鸡由广州市白云区某蛋鸡场提供，小白鼠由南方医科大学实验动物中心提供。

1.1.4 主要试剂及配制

禽用灭活疫苗佐剂购自赛彼科（上海）特殊化学品有限公司。动物组织总 RNA 提取试剂盒购自天根生化科技有限公司。

1.2 方法

1.2.1 病毒的增殖

将病毒原液接种于 10 日龄麻鸭胚，每胚 0.1 mL。之后将胚放入 37℃培养箱中孵育，每天检卵 4 次，弃 24 h 内死亡的鸭胚。收集 24～96 h 死亡的鸭胚，放入 4℃冰箱静置过夜。无菌操作采集死亡胚的尿囊液，8 000 r/min 离心 30 min。按此方法盲传到 7 代，收集所得的病毒液置于 -80℃冰箱保存。

1.2.2 DTMUV 的 RT-PCR 的鉴定

1.2.2.1 病毒 RNA 提取

参照美吉生物医药科技有限公司的动物组织 RNA 提取试剂盒进行：取 250 μL DT-MUV 液于一新的 RNase-Free离心管中，接着加入 750 μL裂解液，剧烈震荡，室温放置2～3 min，让细胞充分裂解，随后加入 200 μL 氯仿至裂解液中，剧烈震荡 15 s，室温静置3 min，4℃ 12 000 r/min 15 min。小心转移上清液至新的离心管，加入等体积 70%的乙醇，涡漩振荡 20 s。将柱子装在2 mL 收集管中，转移一半体积的混合液至柱子中，8 000 r/min30 s。倒弃滤液，柱子重新装回收集管，转移剩余混合液至柱子中。8 000 r/min 30s。倒弃滤液，柱子装回收集管，加入600 μL Buffer Rw2 (乙醇稀释)至柱子中，8 000 r/min 30s，重复上述操作一次。倒弃滤液，柱子装回收集管，10 000 r/min 离心空柱 2 min 甩干柱子基质。将柱子转移至 1.5 mL 离心管，加入 30～100 μL RNase-Freewater 至柱子膜中央，室温静置2 min，10 000 g 离心 1 min。重复上述操作一次。得到的 RNA溶液 -20℃保存或直接用于反转录。

1.2.2.2 DTMUV cDNA 的合成

下载 GenBank 中 DTMUV全基因序列，利用 Oligo 6.0 设计针对它们保守区域的特异性引物，用上述提取的病毒 RNA进行 cDNA 第一链的合成，反转录体系如表 1，20μL 总体积包括下面各组分：DTMUV-F:5’-GGCATTTCCGGACTCCAACT-3’DTMUV-R:5’-CAAGCACACGGCAATCTCAT-3’, 引物扩增长度约为 153bp。

将以上各组分混匀，42℃水浴 1.5h，得到的 cDNA 直接用于 PCR。

1.2.2.3 DTMUV cDNA 的 PCR

将上述得到的 DTMUV 的cDNA 直接用于 PCR，总体系为 20μL，各组分的量如表 2。

以上各组分混匀，置于PCR 扩增仪中，运行如下程序：

反应结束后，取 6μL PCR产物于 2.0%的琼脂糖凝胶进行电泳检测。

1.2.2.4 DTMUV 病毒浓缩

使用 Labscale 小型切向流超滤仪浓缩病毒。首先将所收获的 1L 第 8 代 DTMUV 病毒尿囊液 8 000 r/min 离心30 min，再将上清液倒入浓缩瓶中，开启浓缩设备，对病毒液进行浓缩。

1.2.2.5 DTMUV 灭活疫苗的制备

在上述浓缩的病毒液中加入 β 丙内脂，使其终浓度达0.025%，4℃灭活 24 h，37℃水解 2 h。灭活的病毒液与佐剂按重量比 3:7 比例置于高速搅拌机中 5 000 r/min 振荡 30 min，乳化制成灭活疫苗。

1.2.2.6 免疫蛋鸡

以制备的灭活疫苗免疫健康蛋鸡 50 只，首次免疫剂量为1 mL/ 只，间隔 14 天和 28 天后进行第二次和第三次免疫，免疫剂量均为 2 mL/ 只。3 次免疫途径均为颈背部和胸部皮下多点注射。

1.2.2.7 卵黄抗体制备

在第 3 次免疫后 2 周收集鸡蛋，分离卵黄 ^[6~7] 。再在粗制的卵黄抗体加入 9 倍体积酸化无菌去离子水，搅拌均匀 4℃过夜，次日离心 10 000 r/min 离心 25 min，收集上层水相，加入饱和硫酸铵使其终浓度为50%，4℃静置 1 h，5 000 r/min离心 20 min 弃上清。沉淀用等体积的灭菌生理盐水溶解，加入饱和硫酸铵，使其终浓度为30%，5 000 r/min 离心 20 min，弃上清。沉淀用等体积的 PBS（pH 7.4，0.01 mol/L）溶解，透析24 h。

2、结果与分析

2.1 DTMUV 的繁殖与致死鸭胚的形态观察

DTMUV 第 2 代接种于鸭胚尿囊腔，37℃培养 24～96 h，胚胎发生死亡。结果如图 1，DTMUV 致死的鸭胚，全身充血，头颈部、肌肉有出血点，肝脏有坏死。

2.2 DTMUV 病毒的 RT-PCR鉴定

以设计的 DTMUV 的引物对病毒液进行 RT-PCR, 结果显示 PCR 产物中有预计大小为 153 bp 的 DNA 片段（图 2），表明所使用的病毒液含鸭坦布苏病毒。

2.3 DTMUV 灭活疫苗的安全和无菌检测结果

灭活后病毒原液与佐剂以3:7 乳化后，经物理性状外观检测显示，疫苗外观呈白色均质乳剂。剂型检查，用无菌枪头吸取疫苗滴于冷水中后，呈圆形油滴状不分散。疫苗经5 000 r/min 离心 30 min，无水相析出，较为稳定，因此所制备的疫苗剂型、稳定性及黏度均符合要求。将灭活疫苗接种于琼脂培养基上经 24 h 过夜培养观察结果无细菌生长，经腹腔注射 1 mL 灭活疫苗的 4 只小白鼠观察 4 天后并未死亡，确定该灭活疫苗安全。

2.4 卵黄抗体的物理性状

提取纯化后的卵黄抗体，经物理性状外观检测显示，卵黄抗体外观呈白色半透明状均质液体。

3、讨论

鸡卵黄中含水约 48%，蛋白质约 18%，脂肪约 31%，其中几乎所有脂肪都与蛋白质结合形成脂蛋白。α、β 和 γ 3种蛋白为水溶性蛋白，IgY 是水溶性的 γ 活性蛋白。从卵黄中获得卵黄抗体的过程包括IgY 分离提取和纯化。

IgY 分离关键是除去卵黄中高含量的脂肪及脂蛋白，以获得水溶性组分（WSF）。常见分离方法有有机物沉淀法（聚乙二醇法和硫酸葡聚糖法）、有机溶剂抽提法、天然胶法、中链脂肪酸法、去污剂分离法、水稀释法、超临界气体提取法等。本研究使用水稀释法粗提卵黄抗体，获得水溶性成分，将分离得到的卵黄液加入 9 倍体积酸化无菌去离子水（pH4.6~6.2）稀释搅拌均匀，4℃过夜，次日离心，4℃10 000 r/min 低温超速离心 25 min 去除脂类，收集上清。

IgY 提取的目的是将大量IgY 从水溶液中分离出来得卵黄抗体，主要通过盐析法，盐析破坏蛋白质的水化层，暴露疏水基因，蛋白质的可溶性随着盐浓度的增加呈对数下降，蛋白质很容易沉淀析出。常用的中性盐有硫酸铵和硫酸钠。有学者用水稀释法粗提卵黄获得水溶性成分后，用等体积PBS（pH 值 7.4）稀释，再加入饱和硫酸铵（pH 值 6.0~7.0）使硫酸铵浓度为 50%，4℃静置1 h，5 000 r/min 离心 20 min，弃上清液，再用 PBS 溶解沉淀至原 IgY 的体积，加入饱和硫酸 铵 至 33% 饱 和 度 ，5 000 r/min 离心 20 min，取沉淀，重复 2~3 次即可获得高纯度的 IgY。

为了满足不同使用目的，大多数情况下需对提取得到的卵黄抗体进一步纯化，除去其中的杂蛋白、盐、沉淀剂或其他杂质，获得高纯度的 IgY，文中主要采用透析方法。经分离、提取和纯化后的卵黄抗体外观呈白色半透明状均质液体。

参考文献

[1]赵圆圆，李传峰,朱良强.鸭产蛋下降 – 死亡综合征的临床诊断与病原的初步鉴定[J].扬州大学学报，2011（3）:11-14.

[2] Cao Zhen zhen, Zhang Cun，Liu Yue huan. Tembusu Virus in Ducks，China [J]. Emerg Infect Dis，2011，17（10）：18731875.

[3]HattaH,KimM,YamamotoTA.Novel isolationmethod for hen egg yolk antibody, “IgY”[J].Agric.Biol. Chem, 1990,54:2531-2535.

[4]AulisoCG,ShelokoVA. Detec-tion of microbialantobodies in chicken; immuneofluorescence with serum and egg [J]. Proc Soc Exp Bio Mod,1969,131 （4）：1150-1153.

[5]朱丽萍，颜世敢.鸭坦布苏病毒研究进展 [J]. 中国预防兽医学报，2012，34（1）：79-80．

[6]杨峻,王红林，温国元，等.鸭病毒性肝炎高免卵黄抗体研制与应用 [J]． 湖北农业科学，2012，51（17）:3790-3793.

[7]吴博,王爽，樊兴冬，等.不同方法提取卵黄抗体效果的比较.中国兽药杂志，2012,46（6）：42-45.

作者：汪小丽¹邱志欣²郭霄峰¹(1华南农业大学兽医学院，广州510642；2广州格雷特生物科技有限公司，广州510730)

通讯作者：郭霄峰，xfguo@scau.edu.cn

基金项目：广州市产学研协同创新重大专项 201504281643265

责任编辑：曹伟胜